生姜属于典型的药食同源食材,具有重要食用与药用价值,但其辛辣味制约了其作为即食食品的应用,西南地区利用发酵技术制作泡菜生姜,提升其适口性与功能性,不过目前对这类传统发酵姜制品的组学研究有限,缺乏对其品质形成机制的系统研究。已有研究表明,乳酸菌和酵母菌在泡菜、酸菜等蔬菜发酵中起核心作用,通过代谢糖类、蛋白质和脂质生成风味化合物,然而小黄姜发酵过程中细菌与真菌群落演替,何种代谢物质主导风味形成?菌落与代谢物之间关联如何?多个问题尚未被阐明,因此通过整合代谢与菌群鉴定,可以揭示发酵风味形成的微生物-代谢机制,为开发即食生姜调味品形成理论和技术支持。
研究以云南小黄姜为原料,采用模拟传统工艺的自然发酵体系(40g/L食盐,25°C避光发酵42天),在0、7、14、21、28、35和42天共7个时间点采集样本。研究整合理化测定、代谢物检测(UHPLC-Q Exactive HF-X平台)及全长16S rRNA/ITS PacBio高通量测序,全面追踪发酵过程中品质指标(pH、可滴定酸度、硬度、色泽、亚硝酸盐)、风味成分(糖类、有机酸、游离氨基酸、姜辣素、黄酮等)及微生物群落动态。数据处理方面,代谢原始数据通过Progenesis QI软件进行峰提取与对齐,结合HMDB、METLIN及自建Majorbio数据库进行代谢物注释;差异积累代谢物(DAMs)依据VIP>1、log₂FC>1且校正P<0.05筛选,并用于KEGG通路富集与STEM时序聚类分析(P<0.001)。微生物序列经FASTP质控、FLASH拼接后,使用UPARSE以97%相似度聚类OTUs,RDP Classifier结合SILVA数据库完成物种注释;α/β多样性、PCoA、NMDS、Venn图等Majorbi云平台完成。微生物与代谢物关联网络通过Cytoscape构建,实验数据采用GraphPad Prism进行单因素ANOVA或t检验,并辅以Pearson相关性分析。
研究揭示了小黄姜在发酵过程中品质、代谢与微生物群落的协同演变,理化分析显示,发酵显著降低pH、提高可滴定酸度并富集乳酸菌,风味分析表明,糖类持续消耗为微生物提供能量,而游离氨基酸、总黄酮、姜辣素和姜黄素均显著积累,表明发酵改善适口性,提升营养价值。代谢检测鉴定出数百种差异代谢物,STEM聚类识别出5种显著时序模式,其中持续积累的代谢物显著富集于黄酮和萜类生物合成通路,功能成分在中后期大量形成,微生物群落分析显示,细菌多样性早期下降后稳定,真菌群落相对稳定,植物乳杆菌、发酵毕赤酵母和克鲁维酵母成为优势种,具备产酸、产香及分泌果胶酶/纤维素酶的能力,与理化及风味变化高度一致。整合网络分析识别出4细菌与5真菌的“基石物种”,与有机酸、游离氨基酸、黄酮等功能代谢物及硬度、酸度等品质指标存在显著相关性,例如植物乳杆菌正向驱动乳酸生成并软化组织,发酵毕赤酵母则与酯类和黄酮积累密切相关。
研究揭示了小黄姜自然发酵过程中“微生物群落演替—代谢物动态积累—品质形成”三者之间的内在关联机制,识别出植物乳杆菌、发酵毕赤酵母和克鲁维酵母等核心功能菌株,为后续开发定向发酵剂或复合益生菌奠定了基础。对产业而言,多组学的应用直接推动了高附加值功能性调味品的开发,助力小黄姜从初级农产品向健康食品升级,为智能化、可控化发酵装备与工艺设计提供理论支撑,促进传统泡菜/泡姜产业向绿色、高效、高质方向转型,具有显著的经济潜力与市场推广价值。

图1. 显示小黄姜泡菜在42天发酵过程中理化参数的变化。
A. 显示在42天发酵期间于七个不同时间点采集的样品。
B. 显示在42天发酵期间pH值的变化。
C. 显示在42天发酵期间可滴定酸度(TA)的变化。
D. 显示在42天发酵期间乳酸菌(LAB)数量的变化。
E. 显示在42天发酵期间硬度的变化。

图2. 显示泡姜在42天发酵过程中风味属性的变化。
A. 显示泡姜在发酵过程中葡萄糖含量的变化。
B. 显示泡姜在发酵过程中多糖含量的变化。
C. 显示泡姜在发酵过程中总糖含量的变化。
D. 显示泡姜在发酵过程中可溶性蛋白含量的变化。
E. 显示泡姜在发酵过程中总游离氨基酸(FAAs)含量的变化。
F. 显示泡姜在发酵过程中具有鲜味、甜味和苦味活性的FAAs含量的变化。
G. 显示泡姜在发酵过程中总黄酮含量的变化。
H. 显示泡姜在发酵过程中姜辣素含量的变化。
I. 显示泡姜在发酵过程中姜黄素含量的变化。

图3. 显示泡菜在42天发酵过程中非靶向代谢数据分析结果。
A. 显示不同时间点样本代谢数据的主成分分析(PCA)得分图。
B. 显示不同时间点样本代谢数据的偏最小二乘判别分析(PLS-DA)得分图。
C. 显示第7与第0天(基线)相比的代谢物谱火山图。
D. 显示第14与第0天(基线)相比的代谢物谱火山图。
E. 显示第21与第0天(基线)相比的代谢物谱火山图。
F. 显示第28与第0天(基线)相比的代谢物谱火山图。
G. 显示第35与第0天(基线)相比的代谢物谱火山图。
H. 显示第42与第0天(基线)相比的代谢物谱火山图。
I. 显示差异积累代谢物(DAMs)重叠情况的维恩图。
J. 显示各组中共同鉴定出的前50种DAMs的热图。
K. 显示对各组共有的328种DAMs进行的KEGG通路富集分析结果。

图4. 显示泡姜在42天发酵过程中代谢物的时序积累趋势。
A. 显示通过短时间序列表达挖掘器(STEM)聚类鉴定出的五种具有统计学显著性的代谢模式,模式左上角标注为聚类ID,左下角标明为统计显著性值。
B. 显示Pattern 29中代谢物(n=80)的KEGG通路富集分析结果。
C. 显示Pattern 0中代谢物(n=136)的KEGG通路富集分析结果。

图5. 显示泡姜在42天发酵过程中微生物群落结构的动态变化。
A. 显示泡姜在42天发酵过程中细菌α多样性指数。
B. 显示泡姜在42天发酵过程中细菌群落的主坐标分析(PCoA)结果。
C. 显示泡姜在42天发酵过程中细菌群落的非度量多维尺度分析(NMDS)结果。
D. 显示泡姜在42天发酵过程中真菌α多样性指数。
E. 显示泡姜在42天发酵过程中真菌群落的主坐标分析(PCoA)结果。
F. 显示泡姜在42天发酵过程中真菌群落的非度量多维尺度分析(NMDS)结果。
G. 显示泡姜在42天发酵过程中细菌群落在属水平上的分类组成。
H. 显示泡姜在42天发酵过程中细菌群落在种水平上的分类组成。
I. 显示泡姜在42天发酵过程中真菌群落在属水平上的分类组成。
J. 显示泡姜在42天发酵过程中真菌群落在种水平上的分类组成。

图6. 显示泡姜在42天发酵过程中优势微生物群落的分类学分析。
A. 显示泡姜在42天发酵过程中细菌属水平的组成。
B. 显示泡姜在42天发酵过程中细菌种水平的组成。
C. 显示泡姜在42天发酵过程中真菌属水平的组成。
D. 显示泡姜在42天发酵过程中真菌种水平的组成。

图7. 显示发酵过程中核心微生物群与风味代谢物的整合网络分析。
中央节点表示核心微生物物种(包括细菌和真菌);左侧圆圈表示理化参数;右侧圆圈表示泡菜中的风味代谢物;红线和蓝线分别代表正相关和负相关系数。
参考文献:
Wang J, He H, Lin L, Lin Y, Wang F. Quality attributes, metabolomics and microbial community dynamics of naturally fermented Xiaohuang ginger (Zingiber officinale cv. Xiaohuang): A ready-to-eat flavoring food. Food Chem X. 2025 Nov 3;32:103237.
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