在生物医药的创新性浪潮中,细胞治疗产品,尤其是CAR-T、TCR-T、干细胞及诱导多能干细胞衍生疗法,正以前所未有的潜力改变着难治性疾病的治疗格局。然而,这些“活的药物”在带来希望的同时,也携带着独特的安全挑战。其中,成瘤性与致瘤性风险是监管机构、研发企业和临床医生共同关注的高优先级安全性问题之一,直接关系到产品的临床应用可行性与患者的长期安全。
与传统化学药或大分子生物药不同,细胞治疗产品的风险根植于其生物学本质:
1. 固有的自我更新与增殖能力;
2. 体外操作带来的不确定性;
3. 体内行为的复杂性。
尽管临床中细胞治疗产品直接致瘤的报道罕见,但理论与临床前研究已提示显著风险:如胎儿神经干细胞治疗后出现供体来源的异常增殖组织,以及逆转录病毒载体激活LMO2等原癌基因引发白血病的先例。因此,系统开展成瘤性与致瘤性评价,既是全球监管(FDA、EMA、NMPA)的强制要求,更是对患者安全负责的关键举措。
华测医药将剖析成瘤性与致瘤性的科学内涵,构建一套涵盖体外预警、体内验证、分子机制的多层次评价策略,并结合国内外监管指南及指导原则的最新要求,为研发者提供一条清晰、合规、可操作的评价路径,为细胞治疗产品的临床转化筑牢最关键的安全性基石。
在构建评价体系之前,必须明确两个核心概念的定义与区别,这是设计针对性试验方案的前提。
•成瘤性(Tumorigenicity):成瘤性指接种的细胞自身在动物体内(注射或转移部位)直接形成肿瘤的能力,关键在于肿瘤源自回输的细胞本身。
•致瘤性(Oncogenicity):系指细胞裂解物中的化学物质、病毒、病毒核酸或基因以及细胞成分接种动物后,导致被接种动物的正常细胞形成肿瘤的能力。即接种物(细胞和/或裂解物)促使正常细胞转变为肿瘤细胞的能力。这不一定要求产品细胞自身增殖成瘤。致瘤性风险主要与基因组整合、基因编辑脱靶效应、旁分泌效应相关。
指导原则及监管要求汇总:
| 名称-年份-发布机构-适用产品 | 评价要点 | 检测方法要点 |
| 细胞治疗产品研究与评价技术指导原则(试行)-2017-NMPA-人体来源的活细胞产品 | 区分“致瘤性”与“成瘤性”;综合评估细胞分化状态、生长动力学、基因修饰等因素。 | 免疫缺陷啮齿类动物模型;采用临床拟用产品;需设置对照、足够数量、最大可行剂量、足够观察周期。 |
| 基因修饰细胞治疗产品非临床研究技术指导原则(试行)-2021-CDE-诱导多能干细胞iPS | 重点评估插入突变导致的致瘤风险;iPS需在首次临床前完成致瘤性试验。 | 体内动物接种法;建议掺入未分化iPS细胞作为阳性对照以验证系统灵敏度。 |
| 免疫细胞治疗产品药学研究与评价技术指导原则(试行)-2022-CDE-免疫细胞 | 结合产品来源、目的细胞特性、残留杂质等,通过体内外实验评估恶性转化风险。 | 体内及体外实验结合评估。 |
| 2023-人源干细胞产品药学研究与评价技术指导原则(试行)-2023-NMPA-干细胞产品 | 高代次、复杂处理或基因修饰的干细胞应关注成瘤/致瘤风险;ESCs/iPSCs来源产品需重点检测。 | 软琼脂克隆形成试验、端粒酶活性检测可用于体外成瘤性评估。 |
| 人源干细胞产品非临床研究技术指导原则-2024-CDE-干细胞产品 | 风险分级评估,不同风险产品对应不同试验阶段要求;高风险产品需临床前完成体内外成瘤性试验。 | 动物实验用临床拟用产品;体外方法可选核型分析、软琼脂克隆、端粒酶活性、数字PCR等。 |
| 中国药典2025年版 第三部 0234 生物制品生产用动物细胞基质制备及质量控制-2025-中国药典委员会-生产用细胞基质(成瘤性) | 新建或高代次细胞需进行成瘤性检查;已明确成瘤性的细胞可免检。 | 体内法为金标准;低风险细胞可选用软琼脂克隆等体外法。 |
| 中国药典2025年版 第三部 0234 生物制品生产用动物细胞基质制备及质量控制-2025-中国药典委员会-生产用细胞基质(致瘤性) | 部分成熟细胞系可免检;新型或成瘤性阳性细胞用于疫苗时需检;致瘤性结节需鉴别因子。 | 动物体内接种法,数量需多于成瘤性检查;细胞应扩增至生产代次以上。 |
| Guidance for Industry: Preclinical Assessment of Investigational Cellular and Gene Therapy Products-2013-CBER-细胞治疗产品CT | 根据产品生物学特性评估致瘤或异常增生潜能,如分化状态、基因表达、患者人群等。 | 动物体内接种法,使用临床产品;需有对照、足够数量、最大可行剂量、产品应到达靶部位。 |
| Guideline on quality, non-clinical and clinical aspects of medicinal products containing genetically modified cells-2020-EMA-iPS | 整合病毒载体与iPS相关致癌风险及畸胎瘤成瘤风险需评估。 | / |
| Reflection paper on stem cell-based medicinal products-2011-EMA-干细胞 | 评估hESCs/iPSCs的成瘤性与遗传稳定性;体外指标包括核型、端粒酶、增殖与衰老。 | 选择灵敏模型,考虑细胞特性、给药途径等;成瘤性评估可融入慢性毒性研究。 |
一个稳健的成瘤性评价体系应采用逐步递进、体外与体内相结合的策略。
1、体外预警与筛查:早期发现风险信号
在耗费巨大的体内实验之前,一系列体外实验可以有效筛选高风险细胞群体,并为体内实验设计提供依据。
增殖动力学与永生化标志分析:
长期群体倍增水平监测:绘制细胞超过正常寿限的增殖曲线。永生化或转化细胞往往能突破复制衰老屏障,持续增殖。
端粒酶活性定量检测:端粒酶是细胞维持端粒长度、实现永生化的重要分子。使用高灵敏度的TRAP检测方法,定量评估细胞端粒酶活性。
关键周期蛋白与抑癌蛋白表达:通过Western Blot或流式细胞术检测抑癌蛋白,以及促增殖蛋白的表达水平变化。
转化表型检测:
软琼脂克隆形成试验:正常贴壁细胞在软琼脂中无法生长形成克隆,而转化细胞则可以。该试验方法是中国药典2025版中指定的体外成瘤性评价筛选方法。
接触抑制丧失评估:观察细胞在培养皿中长满单层后是否停止增殖(接触抑制)。转化细胞会堆积生长,形成“聚焦”(focus)。
基因组稳定性分析(见第四部分):核型异常、拷贝数变异(CNV)累积是细胞走向恶性转化的重要驱动因素。
多能性与分化状态监控(针对干细胞产品):
定期通过流式细胞术或qPCR监测多能性标志物(如OCT4, NANOG)的表达。
体外自发分化倾向试验:将细胞在无生长因子的普通培养基中培养一段时间,观察其是否自发分化为不同胚层的细胞,评估未分化细胞的残留水平。
2、体内成瘤性试验:最终的验证关口
体外实验无法完全模拟体内的复杂微环境,因此体内试验是不可替代的终极验证。
动物模型的选择:
•重度免疫缺陷小鼠:如NOD/SCID或NSG小鼠。
•模型选择考量:需考虑接种途径与临床给药途径的相关性。
•阳性对照:应接种已知的高成瘤性人源细胞系(如HeLa)作为试验系统有效性的对照。
•阴性对照:接种已知无成瘤性的人原代细胞(如人成纤维细胞)或仅注射培养基。
试验设计的科学性:
•细胞剂量:应设置多个剂量组,通常包括临床最大拟用剂量及其数倍剂量。
•观察周期:必须足够长,通常为6个月,对于生长缓慢的细胞或风险不确定的产品,可能需延长至9-12个月。
终点指标:
•临床观察:每周测量体重,观察一般状态。
•影像学监测:如果细胞预先标记了荧光素酶或荧光蛋白,可使用小动物活体成像系统。
•尸检与组织病理学:试验终点时,对接种部位、主要器官进行取材观察。评估是否存在结节、增生或肿瘤,并进行分级。
•肿瘤来源确证:对形成的任何肿块进行STR分析或人源特异性免疫组化,确证其来源于接种的人细胞,而非小鼠自发肿瘤。
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